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WB檢測(cè)實(shí)驗(yàn)報(bào)告和詳細(xì)的操作步驟(下)

2023-12-21 14:42:54

來(lái)源/作者:普拉特澤-生物醫(yī)學(xué)整體課題外包平臺(tái)

前兩篇我們總結(jié)了WB檢測(cè)實(shí)驗(yàn)報(bào)告以及詳細(xì)的操作步驟,今天來(lái)學(xué)習(xí)WB實(shí)驗(yàn)報(bào)告的最后一篇吧,希望大家加強(qiáng)學(xué)習(xí)~


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鏈接奉上,大家快點(diǎn)踩著春風(fēng)學(xué)院的肩膀去摘蘋(píng)果吧!那現(xiàn)在我們來(lái)接著講解:

一、實(shí)驗(yàn)?zāi)康?/span>

通過(guò)Western Blot實(shí)驗(yàn)技術(shù)檢測(cè)Cleaved-caspase3、Bax、Bcl-2、NF-κB蛋白在樣本中的表達(dá)。

二、實(shí)驗(yàn)樣本及分組

2.1 實(shí)驗(yàn)樣本

2.2 實(shí)驗(yàn)分組

細(xì)胞:Huh7,Hep3B,Huh7-CR細(xì)胞

分組:Control、CAFs、Sorafenib、Sorafenib+CAFs  

指標(biāo):Cleaved-caspase3、Bax、Bcl-2、NF-κB

三、實(shí)驗(yàn)結(jié)果

3.1 抗體工作信息

3.2正式實(shí)驗(yàn)結(jié)果

WB檢測(cè)各組細(xì)胞樣本中Cleaved-caspase3、Bax、Bcl-2、NF-κB蛋白的表達(dá)水平

 

 圖1: WB表達(dá)水平檢測(cè)圖

 




 圖2:WB檢測(cè)灰度數(shù)據(jù)柱形圖


四、實(shí)驗(yàn)材料

5.1主要儀器

5.2 主要試劑

五、實(shí)驗(yàn)原理

蛋白免疫印跡( Western Blot) 采用的是聚丙烯酰胺凝膠(PAGE)電泳,被檢測(cè)物是蛋白質(zhì),“探針”是抗體,“顯色”用標(biāo)記的二抗。經(jīng)過(guò)PAGE分離的蛋白質(zhì)樣品,轉(zhuǎn)移到固相載體(例如硝酸纖維素薄膜)上,固相載體以非共價(jià)鍵形式吸附蛋白質(zhì),且能保持電泳分離的多肽類(lèi)型及其生物學(xué)活性不變。以固相載體上的蛋白質(zhì)或多肽作為抗原,與對(duì)應(yīng)的特異性抗體起免疫反應(yīng),再與酶或同位素標(biāo)記的第二抗體起反應(yīng),經(jīng)過(guò)底物顯色或放射自顯影以檢測(cè)電泳分離的特異性目的基因表達(dá)的蛋白成分。

六、實(shí)驗(yàn)步驟

7.1.蛋白提取

(1)樣本的收集:

細(xì)胞:用1 ml生理鹽水對(duì)離心下來(lái)的細(xì)胞進(jìn)行洗滌,同時(shí)將其轉(zhuǎn)移至1.5 ml的離心管中。

組織:取適量組織剪碎,研磨勻漿。

(2)按1 ml裂解液加10 μl PMSF(100 mM),搖勻置于冰上。(PMSF要搖勻至無(wú)結(jié)晶時(shí)才可與裂解液混合。)

(3)根據(jù)細(xì)胞量的多少,每管細(xì)胞加100-500 μl含PMSF的裂解液,于冰上裂解30 min。

(4)4℃下12000 rpm離心10 min。離心后的上清分裝轉(zhuǎn)移至1.5 ml的離心管中,用于蛋白定量檢測(cè)。若不能及時(shí)定量蛋白濃度,請(qǐng)置于-80℃保存。

7.2.蛋白定量及處理(BCA法)

(1)使用時(shí)將BCA試劑盒中 Solution A搖晃混勻,根據(jù)樣品數(shù)量,按50體積Solution A加1體積Solution B(50:1)配置適量BCA工作液,充分混勻后即成淡綠色的工作液。BCA工作液室溫24 h內(nèi)穩(wěn)定。

(2)將標(biāo)準(zhǔn)品(1mg/ml BSA)按0、1、2、4、6、8、10 μl的量分別加入96孔板中,再加入去離子水將所有標(biāo)準(zhǔn)品補(bǔ)足到10 μl。

(3)加1 μl的樣品到96孔板中,加去離子水補(bǔ)足到10 μl。

(4)各孔加入200 μl BCA工作液,輕輕用移液器吹打混勻(注意不要產(chǎn)生氣泡以免影響讀數(shù)),37℃孵育30 min。

(5)冷卻到室溫后,用酶標(biāo)儀測(cè)定A562的吸光度值。

(6)根據(jù)標(biāo)準(zhǔn)曲線計(jì)算出樣品中的蛋白濃度。

(7)蛋白變性處理:蛋白溶液與5×loading buffer 按照體積比4:1混勻(此時(shí)蛋白濃度變成實(shí)際檢測(cè)濃度的0.8倍),置于沸水中煮10min,冷卻后進(jìn)行SDS-PAGE電泳,或儲(chǔ)存于-80℃,避免反復(fù)凍融。

(8)蛋白濃度的計(jì)算公式

舉例標(biāo)曲為:Y=aX+b(Y為OD值,X為測(cè)定濃度)

樣品蛋白濃度=[(Y-b)/a]×稀釋倍數(shù)

7.3.Western Blot

(1)配制分離膠和濃縮膠:根據(jù)目的蛋白分子量大小,配分離膠和5%濃縮膠;

蛋白分子量(kDa)分離膠濃度%

(2)上樣:計(jì)算含20 μg蛋白的溶液體積,即為上樣量。用1×loading buffer 補(bǔ)至每個(gè)加樣孔的總體積一致;

(3)電泳:濃縮膠電壓為80 V,40 min,分離膠電壓120 V,30-50 min。溴酚藍(lán)跑至膠底即可終止電泳,進(jìn)行轉(zhuǎn)膜;

(4)轉(zhuǎn)膜:恒壓100V,0.45μm PVDF膜;

(5)封閉:將PVDF膜完全浸沒(méi)在5% milk-PBST或5% BSA-PBST中,室溫輕搖60 min或4℃過(guò)夜;

(6)一抗孵育:用5% BSA-PBST稀釋一抗,4℃孵育過(guò)夜;

(7)洗膜:次日取出PVDF膜,PBST洗膜5次,每次6 min;

(8)二抗孵育:PBST稀釋二抗,室溫孵育60 min;

(9)洗膜:PBST洗膜5次,每次6 min;

(10)顯影:ECL A和B液按體積1:1混合后均勻滴加在膜上,按需求設(shè)置曝光時(shí)間及曝光類(lèi)型,開(kāi)始曝光,曝光結(jié)束后保存圖片并導(dǎo)出圖片。

7.4.圖像分析

用圖像分析軟件Image J對(duì)圖像進(jìn)行灰度分析。

今天關(guān)于WB實(shí)驗(yàn)就分享到這兒啦~如果您在實(shí)驗(yàn)過(guò)程中遇到技術(shù)問(wèn)題,或者需要實(shí)驗(yàn)外包代做,可與我們技術(shù)老師聯(lián)系18570028002(微信同號(hào))


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